這個觀點現在已被修正。如同2019年一篇研究所言,研究人員開始「挑戰『共生體是早期被攔截的吞噬體』這個普遍看法」,並提出共生體「在功能上類似於溶酶體」的模型 。
一項2025年針對倒立水母(Cassiopea xamachana)的研究提供了迄今最明確的證據之一 。研究人員發現,共生體膜——也就是宿主細胞內環繞藻類的膜——上含有V-H⁺-ATPase(VHA)質子幫浦。這個VHA與所有真核細胞中負責酸化吞噬體和溶酶體的質子幫浦完全相同。他們還發現共生體內腔「呈現顯著的酸性」,而抑制VHA或碳酸酐酶的活性會破壞共生關係 。
這項發現與一份石珊瑚細胞圖譜的結果一致,該圖譜將渦鞭毛藻共生體描述為「位於宿主細胞內部一個類似溶酶體的胞器中」。該圖譜顯示,這些隔間並非惰性,而是與消化途徑緊密相連。
對這個假說最直接的測試,來自加州大學柏克萊分校及其合作機構在2025年發表的一份預印本(尚未正式發表於《細胞》期刊)。研究人員利用海葵 Aiptasia——一種廣泛用於珊瑚共生研究的模式生物——生成了高品質的共生體蛋白質組。
他們的發現令人震驚:共生體中富含溶酶體蛋白。他們可視化了溶酶體與共生體的融合過程。更關鍵的是,當他們使用CRISPR/Cas9技術來敲低溶酶體相關基因——包括一個碳酸氫鹽/硫酸鹽轉運蛋白——時,共生關係顯著減弱 。這提供了首個直接的遺傳學證據,證明了共生體的溶酶體身分在功能上是至關重要的。
柏克萊團隊主導的工作並未直接對珊瑚 Galaxea fascicularis 使用CRISPR技術,但相關研究已廣泛探討了這種珊瑚。一份轉錄組分析研究發現,珊瑚宿主與其 Symbiodinium 共生藻之間存在深度的代謝整合,涉及維生素、輔因子、胺基酸、脂肪酸與次級代謝物 。另一項研究則確立 G. fascicularis 作為共生研究極具潛力的新模式系統,顯示白化的成體可以與非原生共生藻重新建立共生關係 。
更廣泛地說,溶酶體劫持假說與其他已知機制相符。一項2022年的研究顯示,珊瑚宿主細胞利用共生體膜上的Rhesus樣通道來控制向藻類輸送氮的數量,而該蛋白在一天之中會動態地進出共生體膜 。2019年的一項研究則發現,與溶酶體功能相關的營養依賴性mTORC1訊息傳導路徑,也參與了珊瑚-藻類的共生過程 。
藻類棲息在類似溶酶體的胞器中,這項發現對於理解這些共生藻為何能夠感染從水母、石珊瑚到海葵等廣泛的宿主,具有重大意義。
如果共生體本質上就是一個被改造的消化隔間,那麼成功感染的關鍵就不是完全避免被消化,而是控制消化過程。藻類巧妙地利用這種酸性且富含酶的環境——透過在低pH值下活化的纖維素酶,從自身的細胞壁釋放糖分,並從宿主那裡獲得穩定的氮和碳供應 。
這也解釋了為何某些藻類比其他藻類更善於共生。研究表明,共生的建立並非隨機:珊瑚會選擇性地吸收特定類型的藻類,而共生體膜上的分子機制決定了哪些藻類能留下來,哪些會被消化掉 。
珊瑚白化——高溫壓力導致共生關係瓦解——在細胞層面上一直是個謎。新的溶酶體劫持模型提供了一個可能的解釋。如果共生體的溶酶體身分是由宿主和藻類訊號的微妙平衡所維持,那麼環境壓力(例如升高的溫度)就可能打破這種平衡,將一個受控的溶酶體變成一個破壞性的溶酶體。
支持此觀點的證據包括一項2023年的研究,該研究發現在白化壓力下,珊瑚的脂質含量與共生體膜螢光之間呈現強烈的負相關,顯示共生關係的喪失與共生體膜的變化有關 。其他研究也指出了在共生和失調狀態下被活化特定免疫和壓力反應路徑 。
需要注意的是,關於加州大學柏克萊分校在 Galaxea fascicularis 中使用CRISPR技術並發表於《細胞》期刊的具體說法,並無法從現有的資料中獲得證實 。該CRISPR研究是在海葵 Aiptasia 中進行的,並以預印本形式發表於 bioRxiv。提供的資料中並未找到完全符合該描述的已發表《細胞》論文。
然而,來自水母、海葵、多種珊瑚物種以及單細胞圖譜的證據匯聚在一起,強烈支持「共選溶酶體機器是刺胞動物-藻類共生關係的基本機制」這個模型。
「共生體」並非一個簡單的避風港。它是一個動態的、類似溶酶體的隔間,珊瑚宿主細胞主動管理它,以支持其進行光合作用的夥伴。這個由蛋白質組學、CRISPR技術和細胞生物學支持的修正觀點,直接解釋了為何某些藻類能與多種宿主兼容,以及為何氣候變遷驅動的熱壓力會破壞這種合作——導致威脅全球珊瑚礁的白化事件。