종양은 T 세포 표면의 P2RY8 수용체를 활성화시키는 분자를 분비합니다. 이는 마치 브레이크처럼 작용해 T 세포가 종양 내부로 진입하는 것을 물리적으로 차단합니다. P2RY8 유전자를 제거하면 이 브레이크가 사라져 T 세포가 고형암 속으로 대거 유입됩니다 . P2RY8 유전자는 G 단백질 결합 수용체(GPCR)를 암호화하며, 이 수용체가 활성화되면 Gα13 신호경로를 통해 T 세포의 이동을 제한합니다. 연구진은 이 경로를 차단함으로써 표준 CAR-T 세포로는 도달할 수 없을 정도로 많은 T 세포가 종양 내에 축적되도록 했습니다 .
종양 내부는 억제 신호로 가득 찬 적대적인 환경입니다. GNAS 유전자(Gαs 단백질 암호화)는 종양 미세환경의 다양한 억제 신호를 통합 처리하는 중앙 신호 허브 역할을 합니다. 이 유전자를 제거하면 T 세포가 이러한 억제 신호에 거의 반응하지 않게 되어, 핵심 항암 효과 분자인 인터페론-감마(IFN-γ) 생산을 지속적으로 유지할 수 있습니다 . 즉, 고형암 내의 면역 억제 조건에 저항성을 갖게 되는 것입니다.
P2RY8과 GNAS를 동시에 제거하면 시너지 효과가 발생합니다. T 세포가 더 많이 종양에 침투할 뿐만 아니라, 침투한 후에도 높은 활성을 유지합니다. 매우 적은 양의 CAR-T 세포만 투여했음에도 불구하고, 폐암 마우스 모델에서 이중 편집 CAR-T 세포를 투여받은 생쥐의 3분의 2는 연구 종료 시점에 종양이 완전히 사라졌습니다. 반면, 대조군 CAR-T 세포를 투여받은 생쥐 중 단 한 마리도 종양을 제거하지 못했습니다 .
이 유전자 편집의 효과는 폐암에만 국한되지 않았습니다. GNAS 단일 녹아웃 CAR-T 세포만으로도 흑색종, 폐암, 췌장암, 위식도 선암, 자궁 육종 등 여러 고형암 모델에서 종양이 위축되는 놀라운 결과를 보였습니다 . 또한 난소암과 흑색종 환자에서 추출한 T 세포를 이용한 실험에서도 동일한 효과가 확인되어, 실제 환자 유래 세포에도 적용 가능함을 입증했습니다 .
장기적인 안전성 측면에서도 고무적인 결과가 나왔습니다. 종양이 제거된 생쥐를 6개월 이상 추적 관찰했지만, 어떤 장기적 부작용도 관찰되지 않아 유리한 안전성 프로파일을 시사했습니다 .
P2RY8과 GNAS의 발견은 연구진이 동시에 개발한 혁신적인 생체 내(in vivo) CRISPR 스크리닝 플랫폼 덕분에 가능했습니다. 이 플랫폼은 종양을 가진 살아있는 생쥐 체내에서 인간 T 세포에 대한 전장 유전자 기능 상실 스크리닝을 가능하게 합니다. 기존의 CRISPR 스크리닝이 시험관 내(in vitro) 환경이나 많은 수의 동물을 필요로 했던 한계를 극복한 것입니다 . 이 시스템은 종양 세포에 CD3 scFv를 과발현시켜 종양 침투 T 세포를 높은 효율로 회수할 수 있게 해, 비교적 적은 수의 동물로도 포괄적인 분석이 가능하도록 설계되었습니다 .
이번 연구 결과는 전체 암의 대다수를 차지하는 고형암에 대한 CAR-T 세포 치료의 효과를 현실화하는 중요한 발걸음입니다. 이중 편집 전략은 고형암 면역치료의 가장 큰 두 가지 장벽인 '취약한 T 세포 침투'와 '면역 억제적 종양 미세환경'을 동시에 해결합니다. 장기 마우스 연구에서 확인된 우수한 안전성 프로파일은 임상 시험으로의 발전 가능성을 더욱 뒷받침합니다 .
종양은 T 세포 표면의 P2RY8 수용체를 활성화시키는 분자를 분비합니다. 이는 마치 브레이크처럼 작용해 T 세포가 종양 내부로 진입하는 것을 물리적으로 차단합니다. P2RY8 유전자를 제거하면 이 브레이크가 사라져 T 세포가 고형암 속으로 대거 유입됩니다 . P2RY8 유전자는 G 단백질 결합 수용체(GPCR)를 암호화하며, 이 수용체가 활성화되면 Gα13 신호경로를 통해 T 세포의 이동을 제한합니다. 연구진은 이 경로를 차단함으로써 표준 CAR-T 세포로는 도달할 수 없을 정도로 많은 T 세포가 종양 내에 축적되도록 했습니다 .
종양 내부는 억제 신호로 가득 찬 적대적인 환경입니다. GNAS 유전자(Gαs 단백질 암호화)는 종양 미세환경의 다양한 억제 신호를 통합 처리하는 중앙 신호 허브 역할을 합니다. 이 유전자를 제거하면 T 세포가 이러한 억제 신호에 거의 반응하지 않게 되어, 핵심 항암 효과 분자인 인터페론-감마(IFN-γ) 생산을 지속적으로 유지할 수 있습니다 . 즉, 고형암 내의 면역 억제 조건에 저항성을 갖게 되는 것입니다.
P2RY8과 GNAS를 동시에 제거하면 시너지 효과가 발생합니다. T 세포가 더 많이 종양에 침투할 뿐만 아니라, 침투한 후에도 높은 활성을 유지합니다. 매우 적은 양의 CAR-T 세포만 투여했음에도 불구하고, 폐암 마우스 모델에서 이중 편집 CAR-T 세포를 투여받은 생쥐의 3분의 2는 연구 종료 시점에 종양이 완전히 사라졌습니다. 반면, 대조군 CAR-T 세포를 투여받은 생쥐 중 단 한 마리도 종양을 제거하지 못했습니다 .
이 유전자 편집의 효과는 폐암에만 국한되지 않았습니다. GNAS 단일 녹아웃 CAR-T 세포만으로도 흑색종, 폐암, 췌장암, 위식도 선암, 자궁 육종 등 여러 고형암 모델에서 종양이 위축되는 놀라운 결과를 보였습니다 . 또한 난소암과 흑색종 환자에서 추출한 T 세포를 이용한 실험에서도 동일한 효과가 확인되어, 실제 환자 유래 세포에도 적용 가능함을 입증했습니다 .
장기적인 안전성 측면에서도 고무적인 결과가 나왔습니다. 종양이 제거된 생쥐를 6개월 이상 추적 관찰했지만, 어떤 장기적 부작용도 관찰되지 않아 유리한 안전성 프로파일을 시사했습니다 .
P2RY8과 GNAS의 발견은 연구진이 동시에 개발한 혁신적인 생체 내(in vivo) CRISPR 스크리닝 플랫폼 덕분에 가능했습니다. 이 플랫폼은 종양을 가진 살아있는 생쥐 체내에서 인간 T 세포에 대한 전장 유전자 기능 상실 스크리닝을 가능하게 합니다. 기존의 CRISPR 스크리닝이 시험관 내(in vitro) 환경이나 많은 수의 동물을 필요로 했던 한계를 극복한 것입니다 . 이 시스템은 종양 세포에 CD3 scFv를 과발현시켜 종양 침투 T 세포를 높은 효율로 회수할 수 있게 해, 비교적 적은 수의 동물로도 포괄적인 분석이 가능하도록 설계되었습니다 .
이번 연구 결과는 전체 암의 대다수를 차지하는 고형암에 대한 CAR-T 세포 치료의 효과를 현실화하는 중요한 발걸음입니다. 이중 편집 전략은 고형암 면역치료의 가장 큰 두 가지 장벽인 '취약한 T 세포 침투'와 '면역 억제적 종양 미세환경'을 동시에 해결합니다. 장기 마우스 연구에서 확인된 우수한 안전성 프로파일은 임상 시험으로의 발전 가능성을 더욱 뒷받침합니다 .